Arbeitsgruppe Klinische Immunologie und Immundiagnostik

Ansprechpartner:
Prof. Dr. med. Friedrich Haag
Tel.:+49 40-7410 5-4595
E-Mail: haag@uke.uni-hamburg.de
Website

Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf
Institut für Immunologie
Martinistraße 52
20246 Hamburg

Ziel der Arbeitsgruppe Klinische Immunologie ist es, eine Schnittstelle zu den klinischen Abteilungen des UKE zu bilden und als Ansprechpartner für methodische und inhaltliche Fragen, welche die Immunologie betreffen, zur Verfügung zu stehen. Darüber hinaus beteiligt sich die Arbeitsgruppe an Grundlagenforschung, insbesondere zur Regulation von Immunzellen durch extrazelluläre Purin-Nukleotide.

Arbeitsgruppen:

Kooperationen innerhalb der Universität Hamburg 

Transplantation

Universitätsklinikum Hamburg-Eppendorf

Klinik für Herz- und Gefäßchirurgie
Prof. Dr. Sonja Schrepfer
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PD Dr. med. Tobias Deuse
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III. Medizinische Klinik und Poliklinik (Nephrologie)
Prof. Dr. med. Friedrich Thaiss
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Kinderklinik
Pädiatrische Gastroenterologie und Hepatologie
Prof. Dr. med. Rainer Ganschow; Dr. med. Andrea Briem-Richter
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Tumorimmunologie

II. Medizinische Klinik und Poliklinik
Hämatologie/Onkologie
Dr. med. Djordje Atanackovic
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Infektionsimmunologie

Ambulanzzentrum Infektiologie
PD Dr. med. Jan van Lunzen
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Kooperationen mit anderen Hochschulen 

Case Western Reserve University, Cleveland, USA
Prof. George R. Dubyak
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University of Rochester Medical Center, Rochester, USA
Frances Lund, Ph. D.
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Kooperationen mit Institutionen 

CSIC Instituto de Parasitologia y Biomedicina, Granada, España
Dr. Jaime Sancho Lopez
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INSERM U955, Rouen, France
S. Adriouch/Prof. Dr. M. Seman

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Kooperationen mit Firmen 

Provecs Medical GmbH
Ansprechpartner: Dr. F. Schnieders
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Aesculabor Hamburg GmbH
Ansprechpartner: Dr. Thorsten Krieger
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Technologien 

Labor/Methoden

  • quantitative RT-PCR (Transplantation
  • ATP-Produktion von Lymphozyten (Immunknow) (Transplantation)
  • Multi-color Durchflusszytometrie (Tumorimmunologie)
  • rekombinante Produktion von Autoantigenen
  • Überexpression von Autoantigenen in transfizierten Zelllinien
  • genetische Immunisierung zur Herstellung von Antiseren gegen Autoantigene
  • Immunfluoreszenz-Technik zum Nachweis von Auto-AK
  • ELISA-Technik zum Nachweis von Auto-AK
  • Multi-color Durchflusszytometrie

Ausstattung/Geräte

  • Real-time PCR Geräte (Transplantation)
  • Luminometer (Transplantation)
  • FACS Canto (Tumorimmunologie)
  • Schüttelinkubator
  • Fluoreszenzmikroskop
  • Photometer
  • FACS Canto
  • FACS Calibur
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Publikationen 

  • Stellbrink, H. J., van Lunzen, J., Westby, M., O'Sullivan, E., Schneider, C., Adam, A., Weitner, L., Kuhlmann, B., Hoffmann, C., Fenske, S., Aries, P. S., Degen, O., Eggers, C., Petersen, H., Haag, F., Horst, H. A., Dalhoff, K., Mocklinghoff, C., Cammack, N., Tenner-Racz, K., Racz, P. Effects of interleukin-2 plus highly active antiretroviral therapy on HIV-1 replication and proviral DNA (COSMIC trial). Aids. 16: 1479-87 (2002).
  • Hempp C, Haag F, Koch-Nolte F, Krieger T (2007) Identification of two new autoantigens in patients with high titers of antinuclear antibodys using protein macroarray technology. In: From Etiopathogenesis to the Prediction of Autoimmune Diseases: Relevance of Autoantibodies. Autoantigens, Autoantibodies, Autoimmunity 5: 551-561.
  • Scheuplein F, Schwarz N, Adriouch S, Krebs C, Bannas P, Rissiek B, Seman M, Haag F, Koch-Nolte F (2009). NAD+ and ATP released from injured cells induce P2X7-dependent shedding of CD62L and externalization of phosphatidylserine by murine T cells. J Immunol 182: 2898-908.
  • Adriouch S, Bannas P, Schwarz N, Fliegert R, Guse AH, Seman M, Haag F, Koch-Nolte F (2008). ADP-ribosylation at R125 gates the P2X7 ion channel by presenting a covalent ligand to its nucleotide binding site. Faseb J 22: 861-869.
  • Hong S, Brass A, Seman M, Haag F, Koch-Nolte F, Dubyak GR (2007). Lipopolysaccharide, IFN-gamma, and IFN-beta induce expression of the thiol-sensitive ART2.1 Ecto-ADP-ribosyltransferase in murine macrophages. J Immunol 179: 6215-27.
  • Adriouch S, Hubert S, Pechberty S, Koch-Nolte F, Haag F, Seman M (2007). NAD+ released during inflammation participates in T cell homeostasis by inducing ART2-mediated death of naive T cells in vivo. J Immunol 179: 186-94.
  • Bannas P, Adriouch S, Kahl S, Braasch F, Haag F, Koch-Nolte F (2005). Activity and specificity of toxin-related mouse T cell ecto-ADP-ribosyltransferase ART2.2 depends on its association with lipid rafts. Blood 105: 3663-70.
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