AG Entwicklung/Diagnostik/Therapie / Prof. Dr. med. Reinhard Bredehorst
PD Dr. Edzard Spillner 

Labor/Methoden

  • Molekularbiologie
  • Proteinbiochemie
  • Rekominante Expression
  • Chemische Synthese
  • Tierversuche
  • Zellkultur
  • Medizinische Diagnostik

Ausstattung/Geräte

  • Inkubatoren
  • PCR, ELISA, FACS, BiaCore
  • Sterile Werkbank
  • Elektrophoresegeräte
  • Zentrifugen
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AG Experimentelle Immunologie und Hepatologie / Prof. Dr. Gisa Tiegs 

Labor/Methoden

  • Isolierung intrahepatischer Zellpopulationen
  • Magnet-basierte Zellaufreinigung
  • ELISA
  • Multi-Color-FACS-Analysen

Ausstattung/Geräte

  • Real-time RT-PCR System (CFX 96 Real-time System, BioRad)
  • Multifunktionsreader (Lumineszenz, Fluoreszenz, Absorption; infinite M200,TECAN)
  • VersaDoc Imaging System (DNA-Gel-/WesternBlot-Analyse, BioRad)
  • Analysegerät COBAS Mira (ALT,AST, LDH)
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AG Immunmonitoring / Prof. Dr. Friedrich Haag 

Labor/Methoden

  • quantitative RT-PCR (Transplantation
  • ATP-Produktion von Lymphozyten (Immunknow) (Transplantation)
  • Multi-color Durchflusszytometrie (Tumorimmunologie)

Ausstattung/Geräte

  • Real-time PCR Geräte (Transplantation)
  • Luminometer (Transplantation)
  • FACS Canto (Tumorimmunologie)
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AG Charakterisierung neuer Autoantigene / Prof. Dr. Friedrich Haag 

Labor/Methoden

  • rekombinante Produktion von Autoantigenen
  • Überexpression von Autoantigenen in transfizierten Zelllinien
  • genetische Immunisierung zur Herstellung von Antiseren gegen Autoantigene
  • Immunfluoreszenz-Technik zum Nachweis von Auto-AK
  • ELISA-Technik zum Nachweis von Auto-AK

Ausstattung/Geräte:

  • Schüttelinkubator
  • Fluoreszenzmikroskop
  • Photometer
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AG Immunregulation durch extrazelluläre Purin-Nukleotide / Prof. Dr. Friedrich Haag 

Labor/Methoden

  • Multi-color Durchflusszytometrie

Ausstattung/Geräte:

  • FACS Canto
  • FACS Calibur
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AG Leukocytes and Renal Inflammation / Prof. Dr. Rolf A.K. Stahl 

Labor/Methoden

  • Nierenbiospieregister
  • IHC Analyse von humanen Nierenbiospien
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AG Chemokines and Renal Inflammation / Prof. Dr. Ulf Panzer 

Labor/Methoden

  • Tiermodelle
  • FACS Analysen

Ausstattung/Geräte

  • Laser Mikrodissektionsanlage
  • Durchflusszytometer
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AG Autoimmune Lebererkrankungen / PD Dr. Christoph Schramm 

Labor/Methoden

  • Mausmodelle immunologischer Lebererkrankungen
  • in vitro-Konversion zu Treg, Suppressorassays
  • intrazelluläres Zytokinstaining
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AG Neuroimmunologie / Dr. Manuel Friese 

Labor/Methoden

  • Tiermodelle (humanisiert, transgen)
  • Durchflusszytometrie
  • Immunohistochemie
  • Primäre Zellkulturen (Neurone, Mikroglia, Immunzellen)
  • T-Zellklonierung

Ausstattung/Geräte

  • EliSPOT
  • Multiplex
  • Fluoreszenzmikroskope
  • Durchflusszytometer
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AG Infektionsimmunologie / Prof. Dr. Hans-Willy Mittrücker 

Labor/Methoden

  • Isolierung und Charakterisierung von Lymphozytenpopulationen
  • Mehrfarben-Durchflusszytometrie
  • Maus-Infektionsmodelle für intrazelluläre Bakterien
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AG Molekulare Immunologie / Prof. Dr. Friedrich Nolte 

Labor/Methoden

  • Zellphänotypisierung/Durchflusszytometrie
  • genetische Immunisierung/rekombinante Antikörper
    (Tumor; Autoimmunität; Infektion)

Ausstattung/Geräte

  • Durchflusszytometer
  • Immunfluoreszenzmikroskop
  • Real-Time PCR Maschine
  • Victor Platten-Reader
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AG Immunregulation / PD Dr. Eva Tolosa 

Labor/Methoden

  • Multiparameter flow cytometry
  • Cell subset isolation and phenotyping
  • Analysis of T cell function
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AG Stroke and Inflammation / PD Dr. Tim Magnus 

Labor/Methoden

  • Temporary Middle Cerebral Artery Occlusion - Maus
  • Permanent Middle Cerebral Artery Occlusion - Maus
  • Mouse Whole Brain FACS Analysis of Immune cells
  • Immunohistochemistry and -fluorescence
  • Primary Cell Culture (Neurons, Microglia, Glia)

Geräte/Ausstattung

  • Fluorescence Microscope
  • Stroke - Work Spaces with Laser Doppler
  • ELISA-Readers
  • Molecular Biology Equipment (PCR, Western, E'phoresis)
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AG Transplant and Stem Cell Immunobiology / Prof. Dr. Sonja Schrepfer 

Labor/Methoden

  • in vivo Bioluminescence Imaging
  • T Cell Assays (ELISPOT, CBA, MLR) and donorspecific immune response(donorspecific antibodies, FACS, ImmuKnow)
  • Histology, immunohistochemistry and immunofluorescence; Molecular biology(RT-PCR, western blot, membrane dot arrays, ELISA)
  • Microsurgery (mice/rats): Solid organ transplantation (heart, lung, trachea, skin, aorta) and stem cell transplantation (bone marrow tx, adult and embryonic stem cells
  • Cell Culture (Isolation and expansion of lymohocytes, endothelial cells,smooth muscle cells, adult and embryonic stem cells, cardiomyocytes, airway cells); human and rat/mouse/hamster

Ausstattung/Geräte

  • in vivo Lumineszenz und Fluoreszenz
  • Kleintier OP
  • S1 Labor, Molekularbiologie
  • Histologie
  • Zellkultur
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AG Transplantationsimmunolgische Diagnostik, HLA Labor / Prof. Dr. Thomas Eiermann 

Labor/Methoden

  • HLA typing by reverse SSO
  • HLA sequencing
  • HLA antibodies by ELISA
  • HLA antibodies by LUMINEX
  • KIR geneotyping by LUMINEX

Ausstattung/Geräte

  • ABI3130
  • Luminex100
  • ELX800
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AG Herz- und Lungentransplantation / PD Dr. Tobias Deuse 

Labor/Methoden

  • T Cell Assays (ELISPOT, CBA, MLR) and donorspecific immune response donorspecific antibodies, FACS, ImmuKnow)
  • In vivo Bioluminescence Imaging
  • Cell Culture (Isolation and expansion of lymohocytes, endothelial cells, smooth muscle cells, adult and embryonic stem cells, cardiomyocytes, airway cells); human and rat/mouse/hamster
  • Microsurgery (mice/rats): Solid organ transplantation (heart, lung, trachea, skin, aorta) and stem cell transplantation (bone marrow tx, adult and embryonic stem cells)
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AG Hepatobiliäre Transplantation / Dr. Martina Koch / Prof. Dr. Björn Nashan 

Labor/Methoden

  • Tiermodelle Nierentransplantaton
  • Durchfusszytometrie
  • Molekularbiologie
  • Immunhistologie
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AG Immungenetik / Dr. Hansjörg Thude 

Labor/Methoden

  • DNA-Isolierung, PCR-SSP, PCR-RFLP, Gelelektrophorese, MAIEA, ELISA, FACS, Zellkultur

Ausstattung/Geräte

  • ELISA Reader
  • PCR-Geräte
  • Durchflusszytometer
  • Spannungsgeräte
  • Sterilbänke, Brutschränke
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AG Tumorimmunologie / PD Dr. Heidi Schwarzenbach 

Labor/Methoden

  • Electrophoretic Mobility Shift Assay
  • Protein-Protein Interaktion/ Pull-down Assay
  • Western Blot
  • Transfektion Assay (Reporter-Luziferase Assay, mRNA Expression)
  • Chromatin Immunpräzipitation (ChIP)Quantitative Real-Time PCR

Ausstattung/Geräte

  • ProteanII Gel Elektrophorese System
  • Mastercycler Eppendorf
  • Glomax Luminometer
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AG Tumorgenetik / PD Dr. Heidi Schwarzenbach 

Labor/Methoden

  • Zirkulierende DNA/RNA Extraktion aus Plasma/Serum (Fraktionierung)
  • Isolierung genomischer DNA aus Leukozyten/Tumorgewebe
  • Fluoreszens PCR basierte Mikrosatelliten Analyse für LOH Auswertung am Genetic Analyser
  • miScript Primer Assay
  • quantitative Real Time PCR

Ausstattung/Geräte

  • 3130 Genetic Analyzer Applied Biosystem
  • Mastercycler Eppendorf
  • Nanodrop Photometer
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Bernhard-Nocht-Institut für Tropenmedizin Hamburg 

Arbeitskreis Helminthen-Immunologie / Dr. Minka Breloer

Labor/Methoden

  • Murine Infektionsmodelle: Strongyloides ratti, Lithomosoides sigmodontis
  • Analyse von Maus Lymphozyten-Aktivierung in vitro: Zytokin-ELISA und Proliferation per 3H ThYmidin inkorporation/CFSE Ausverdünnung, Färbung und Analyse von Oberflächen Proteinen per Durchflusszytometrie.
  • In vivo: adoptiver Transfer von Lymhozyten
  • Konstruktion und screening einfacher und gemischter Knochenmarkschimären

Arbeitskreis Dr. Anke Osterloh

Labor/Methoden

  • FACS, Immunfluoreszenz, ELISA, ELISPOT, SDS-PAGE/Western-Blot, PCR

Arbeitskreis Dr. Marc Jacobsen

Labor/Methoden

  • Vielfarbenflusszytometrie
  • primäre T Zellkultur
  • quantitative PCR
  • Fluoreszenz-aktivierte Zellsortierung

Ausstattung/Geräte

  • FACS Aria
  • FACS LSRII
  • FACS Calibur

Arbeitskreis PD Dr. Thomas Jacobs

Labor/Methoden

  • Infektionmodelle der Malaria
  • Infektionsmodelle der T. cruzi-Infektion
  • Analyse der T-Zellantwort

Ausstattung/Geräte

  • ELISPOT
  • FACS-Sorter
  • FACS-Analyzer
  • Histologie (Cryo, 4 Farben)

Abteilung für Molekulare Parasitologie / Prof. Dr. Egbert Tannich

Labor/Methoden

  • Hormonsubstitution, diverse Operationstechniken bei der Maus, in vitro-Kultivierung von Entamoeba histolytica, molekularbiologische Methoden, Hormonuntersuchungsmethoden, Immunhistologie
  • Intrazelluläre Zytokin-FACS-Analysen, Cell sorting, ELISPOT, ELISA, rt-PCR, Immunhistologie

Ausstattung/Geräte

  • FACS Calibur
  • Cell sorter
  • Light-,Robocycler
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Heinrich-Pette-Institut - Leibniz-Institut für Experimentelle Virologie (HPI) 

Abteilung Molekulare Virologie / Prof. Dr. Thomas Dobner

Labor/Methoden

  • Gesamtspektrum virologischer Methoden
  • Gesamtspektrum molekularbiologischer Methoden
  • Herstellung von Adenovirus-Vektoren der 1. und 2. Generation
  • Herstellung konditional replikationskompetenter Adenovirus-Vektoren (CRAds)
  • Tiermodelle zur Testung antitumoraler Wirksamkeit

Ausstattung/Geräte

  • Komplett ausgestattete S2-Laboratorien für Virusanzucht and Gewebekultur
  • Komplett ausgestattete Laboratorien für gentechnische Arbeiten der Sicherheitsstufe 2
  • FACS, konfokale Laserscanning Mikroskopie

Abteilung Zellbiologie und Virologie / Prof. Dr. Joachim Hauber

Labor/Methoden

  • S3 - HIV Infektionsexperimente
  • Primärzellkultur
  • Lentiviraler Gentransfer
  • in vitro Generierung von Dendritischen Zellen

Ausstattung/Geräte

  • FACS-Aria Cell Sorter
  • RoboSep Cell Separator
  • ÄKTA HPLC
  • 7500 Fast Real-Time PCR System (Applied Biosystems)
  • BIACORE X system

Abteilung Virologie und Immunologie/ Prof. Dr. med. Wolfram Brune

Labor/Methoden

  • Herstellung rekombinanter Herpesviren
  • Apoptose- und Zelltod-Assays
  • Signalwege der angeborenen Immunität
  • Maus-Modell der CMV-Infektion

Ausstattung/Geräte

  • Komplett ausgestattete S2-Laboratorien für Virusanzucht and Gewebekultur
  • Komplett ausgestattete Laboratorien für gentechnische Arbeiten der Sicherheitsstufe 2

Forschungsgruppe Molekulare Pathologie / Dr. Stocking

Labor/Methoden

  • Entwicklung Gamma- und Lentivirale Vektoren
  • Knochenmarktransplantation der Maus

Seniorprofessur Tumorvirologie / PD Dr. Michael Bruns

Labor/Methoden

  • Immunhistologie, Molekularbiologie, FACS
  • Immunhistologie, Molekularbiologie, Virologie, Serologie

Ausstattung/Geräte

  • Mausstallungen
  • Microtom
  • Kryostat
  • EM-Kryo-Mikroskopie und Fluoreszenz-Mikroskope
  • FACS-Canto
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Forschungszentrum Borstel - Leibniz-Zentrum für Medizin und Biowissenschaften 

Strukturbiochemie / Prof. Dr. Otto Holst

Labor/Methoden

  • Für alle Themen und Projekte: Nass-chemische Analysen inkl. Photometrie, GC, und GC-MS. Reiniung von Molekülen mittels Chromatographie. Strukturanalysen mittels NMR-Spektroskopie und Massenspektrometrie.

Ausstattung/Geräte

  • Für alle Themen und Projekte: HPLC, HPAEC, Gas-chromatographie, MSD GLC-MS, FPLC, Zugang zu 360 and 700 MHz kryo probe NMR Spektrometern, und zu MALDI-TOF and ESI-Cyclotron-FT Massenspektrometern.

Infektionsimmunologie / Dr. Christoph Hölscher

Labor/Methoden

  • Infektionsmodelle der Tuberkulose und Chagas Krankeit
  • Embryonale Stammzellkultur und gene targeting
  • In vitro Differenzierung, Infektion und Analyse von Knochenmark-Makrophagen
    und Dendritischen Zellen; in vitro Differenzierung von TH1, TH2 und TH17 Zellen
  • Cytometric bead arrays
  • Funktionelle T Zell Analysen (Proliferation, Antigen-spezifische Zytokin-Seretions assays,
    ELISPOTs, Zytotoxische Analysen, Herstellung von Mtb-spezifischen MHC Klasse I Tetrameren
    und Klasse II Multimeren und Markierung spezifischer CD4+ und CD8+ T

Ausstattung/Geräte

  • FACS Canto unter BSL3 Bedingungen
  • FACS Array unter BSL3 Bedingungen
  • Intravitale Mikroskopie unter BSL3 Bedingunen
  • Life Cell Imaging unter BSL3 Bedingunen
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